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瓊脂糖凝膠電泳實驗指南:從原理到操作全解析-賽默飛

來源:賽默飛世爾科技(中國)有限公司   2025年07月01日 09:48  


 

在生物實驗室中,瓊脂糖凝膠電泳是 DNA 和 RNA 基于片段大小進行分離的常用方法。瓊脂糖凝膠基質為多孔結構,可用作核酸分子遷移的篩網。為了盡可能提高 DNA 分離的準確性,需要選擇使用高質量的瓊脂糖、大小合適的 DNA ladder 和高靈敏度的 DNA 染料。 Thermo Fisher Scientific 可提供多種經優(yōu)化用于瓊脂糖凝膠電泳的試劑。

 

 

瓊脂糖凝膠用于 DNA 片段的分離和分析。制備凝膠時,需要瓊脂糖粉末和電泳緩沖液。賽默飛E-Gel 瓊脂糖預制膠是無需電泳緩沖液的瓊脂糖凝膠,在瓊脂糖基質中嵌入了電極。每個瓊脂糖預制膠在包裝的透明塑料盒內均包含離子發(fā)生系統(tǒng)、pH 平衡系統(tǒng)和 DNA 染料。還包括兩個與凝膠和電極接觸的離子交換矩陣(ion exchange matrice,以下簡稱 IEM)。IEM 在整個預制凝膠中提供持續(xù)的離子流,從而產生進行電泳所需的持續(xù)電場。

 

E-Gel 預制凝膠電泳系統(tǒng)的三步法實驗流程

E-Gel 預制瓊脂糖凝膠電泳系統(tǒng)包括電泳設備、用于圖像捕獲的相機、預制瓊脂糖凝膠、Ladder 和上樣緩沖液,共同作用以簡化核酸電泳實驗流程。

三步法實驗流程簡單又方便:

1. 上樣

2. 電泳

3. 分析

圖片10.png

 

電泳過程無需緩沖液即可進行,節(jié)省了實驗時間,減少了繁瑣的操作。

 

E-Gel 瓊脂糖凝膠電泳和成像系統(tǒng)

與常規(guī)電泳方法相比,使用E-Gel 預制瓊脂糖凝膠電泳系統(tǒng)可實現(xiàn)更快的電泳設置、運行和分析。

以下兩種E-Gel核酸電泳系統(tǒng)均具備:

直觀的用戶界面,配備預設的電泳程序

內置透射儀,用于實時觀察電泳情況

高分辨率凝膠成像相機

圖像存儲和聯(lián)網能力

 

瓊脂糖凝膠電泳實驗與技巧

I部分:向DNA樣本說再見——常見瓊脂糖凝膠電泳錯誤

 

1. 使用水代替凝膠緩沖液或電泳緩沖液

瓊脂糖凝膠配制和電泳通常使用TAE或TBE緩沖液進行。 如果您使用水進行凝膠配制和跑電泳,您的凝膠將在電泳時很快融化。 TAE、TBE和水都是透明的溶液;因此,在配制時請檢查容器的標簽。

 

2. 使用了錯誤濃度的瓊脂糖

DNA凝膠電泳所需的標準瓊脂糖濃度為1.0%。濃度越高,小條帶的分辨率越高;反之,瓊脂糖濃度越低,大分子量條帶的分辨率和分離程度越高。 如果使用了錯誤濃度的瓊脂糖凝膠,就很難確定DNA條帶的可靠性。 當使用低百分比濃度瓊脂糖凝膠時要小心;它們往往較軟,更容易破損。

 

3. 顛倒了電泳槽與電源連接線的方向

這是很容易犯的錯誤,但是如果你不小心顛倒了電泳槽與電源連接線的方向,結果將會非常令人沮喪。 因為樣本會向相反方向移動,而且由于上樣孔與凝膠的末端很近,您會丟失所有的樣本。 開始您的電泳后確保DNA樣本以正確的方向進入凝膠;如果您看到您的條帶向錯誤的方向移動,請顛倒電源線的方向。

 

II部分: 瓊脂糖凝膠中實現(xiàn)更高分辨率的5種方法

1. 什么是適合于您的瓊脂糖凝膠電泳的正確緩沖液?

進行DNA瓊脂糖凝膠電泳所需的緩沖液類型,主要取決于DNA片段大小和電泳后的應用。 進行瓊脂糖凝膠電泳最常見的兩種緩沖液是Tris-乙酸EDTA緩沖液(TAE)和Tris-硼酸EDTA緩沖液(TBE)。 因為兩種緩沖液的pH值都接近中性,所以緩沖液中的DNA都帶凈負電荷并向凝膠裝置正極(+)方向移動。

 

對于小片段DNA (<1000 bp),如果沒有計劃從凝膠中回收DNA,那么推薦使用1x TBE緩沖液。 TBE溶液具有高離子強度和緩沖能力。 TAE緩沖液,結合低電場強度(1–2 V/cm),分離大DNA(12–15 kb)。 TAE緩沖液與瓊脂糖相互作用,相比較TBE緩沖液中的瓊脂糖凝膠,會產生更低的電滲透,更大的表面孔經,和更低的電場強度,可降低大DNA的smear現(xiàn)象。

 

2. 為了獲得分辨率您需要的DNA上樣量是多少?

DNA樣本量可以是各種各樣的,關鍵是您正在分離的DNA條帶的DNA含量。 最小可能被檢測的DNA的量依賴于所使用的染色方法(例如,使用SYBR Safe DNA凝膠染色可以檢測出 3 ng的DNA。 一個清晰且界限分明的條帶中DNA最大量為100 ng。

 

3. 凝膠配制如何影響條帶分辨率?

推薦的瓊脂糖凝膠厚度為3-4 mm;厚度超過5mm的凝膠會產生模糊的條帶和更高的染色背景。與此類似,覆蓋在電泳裝置中凝膠上的電泳緩沖液厚度為3-5mm。 緩沖液太多會降低DNA遷移率并造成條帶變形。

 

梳齒的厚度也很重要,它會顯著影響分辨率。 薄梳(1 mm)會給出界限清晰的條帶,而厚梳會產生厚條帶,導致分辨率降低。 梳齒應充分清洗以去掉可能的殘留物,否則可能會在泳道內產生波浪線。 此外,在去除梳齒前要先加入緩沖液,以減少瓊脂糖孔附近的撕裂。

 

4. 凝膠類型影響條帶分辨率嗎?

根據(jù)DNA的應用和大小,瓊脂糖類型會影響DNA分辨率。 凝膠強度,凝膠融解溫度,和電滲透是選擇合適瓊脂糖時的重要因素。 Thermo Fisher提供一系列的瓊脂糖類型,專為特定片段大小和應用的優(yōu)化結果而設計。

 

UltraPure™瓊脂糖是具有標準融解溫度的多用途瓊脂糖,專為常規(guī)分離分析而設計。 UltraPure™ 瓊脂糖可分離500 bp至23,000 bp范圍內DNA和RNA。

UltraPure™瓊脂糖1000專為PCR片段和其它短DNA片段提供更高的分辨率的凝膠。 瓊脂糖1000更容易操作,因為它具有更強的凝膠結構: 凝膠強度超過1,400 g/cm2。

作為低熔/凝固溫度的瓊脂糖,UltraPure™低熔點瓊脂糖被推薦用于快速DNA凝膠提取方案。 此瓊脂糖分離范圍為50 bp至1,000 bp。

 

5. 您如何選擇瓊脂糖凝膠電泳運行環(huán)境?

推薦的凝膠電泳裝置內的電壓是4–10 V/cm(正極和負極之間的距離,不是凝膠長度)。 如果電壓太低,遷移率會降低,而且條帶會因擴散而變寬。 如果電壓太高,條帶分辨率會降低,這主要是由于凝膠過熱引起的。


 

 

 

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賽默飛世爾科技(中國)有限公司

 


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